Микробиота плодных оболочек при интактном плодном пузыре и доношенной беременности

Цель исследования. Изучить микробный пейзаж плодных оболочек при интактном плодном пузыре и доношенной беременности

Материалы и методы. У 19 беременных (средний возраст 31.0 ± 5.3 года, средний срок гестации 39.3 ± 0.65 нед) с неповрежденными плодными оболочками во время элективного кесарева сечения проводился забор ткани плодных оболочек с целью выявления следующих микроорганизмов методом полимеразной цепной реакции: Lactobacillus spp., Enterobacteriaceae, Streptococcus spp., Staphylococcus spp., Gardnerella vaginalis/Pre-votella bivia/Porphyromonas spp., Eubacterium spp., Sneathia spp./Leptotrihia spp./ Fusobacterium spp., Megasphaera spp./Veillonella spp./ Dialister spp., Lachnobacterium spp./Clostridium spp., Mobiluncus spp./Corynebacterium spp., Peptostreptococcus spp., Atopobium vaginae, Mycoplasma hominis, Ureaplasma (urealyticum + parvum), Candida spp., Mycoplasma genitalium.

Результаты. Стерильные оболочки обнаружены у 5 беременных (26.3 %), в остальных случаях выявлена общая бактериальная масса (ОБМ) 10⁴⁵ (10³⁵-10^5-8) геном-эквивалентов (ГЭ)/образец. Преобладали представители семейства Enterobacteriaceae — в среднем 10⁴⁵ ГЭ/образец, лишь в одном случае выявлена Candida spp. В 42.1 % случаев при выявлении ОБМ конкретные виды микроорганизмов идентифицированы не были.

Заключение. На плодных оболочках при доношенной беременности допустимо присутствие ОБМ в среднем 10⁴⁵ (10³⁵-10^5-8) ГЭ/образец, в которой преобладают Enterobacteriaceae в среднем 10⁴⁵ ГЭ/образец.

1. Parnell L.A., Briggs C.M., Cao B. et al. Microbial communities in placentas from term normal pregnancy exhibit spatially variable profiles // Sci. Rep. 2017. Vol. 7: 11200. doi: 10.1038/s41598-017-11514-4.

2. Bagga R., Arora P. Genital micro-organisms in pregnancy // Front. Public Health. 2020. Vol. 8: 225. doi: 10.3389/fpubh.2020.00225.

3. Lim E.S., Rodriguez C., Holtz L.R. Amniotic fluid from healthy term pregnancies does not harbor a detectable microbial community // Microbiome. 2018. Vol. 6: 87. doi: org/10.1186/s40168-018-0475-7.

4. Aagaard K., Ma J., Antony K.M. et al. The placenta harbors a unique microbiome // Sci. Transl. Med. 2014. Vol. 6 (237): 237ra65.

5. Collado M.C., Rautava S., Aakko J., Isolauri E., Salmin-en S. Human gut colonisation may be initiated in utero by distinct microbial communities in the placenta and amniotic fluid // Sci. Rep. 2016. Vol. 6: 23129.

6. Ardissone A.N., de la Cruz D.M., Davis-Richardson A.G. et al. Meconium microbiome analysis identifies bacteria correlated with premature birth // PLoS One. 2014. Vol. 9 (3): e90784.

7. Moles L., Gomez M., Heilig H. et al. Bacterial diversity in meconium of preterm neonates and evolution of their fecal microbiota during the first month of life // PLoS One. 2013. Vol. 8 (6): e66986.

8. Satokari R., Gronroos T., Laitinen K., Salminen S., Isolauri E. Bifidobacterium and Lactobacillus DNA in the human placenta // Lett. Appl. Microbiol. 2009. Vol. 48 (1). P. 8-12.

9. Bearfield C., Davenport E.S., Sivapathasundaram V., Allaker R.P. Possible association between amniotic fluid micro-organism infection and microflora in the mouth // BJOG. 2002. Vol. 109 (5). P. 527-533.

10. Rautava S., Collado M.C., Salminen S., Isolauri E. Probiotics modulate host-microbe interaction in the placenta and fetal gut: a randomized, double-blind, placebo-controlled trial // Neonatology. 2012. Vol. 102 (3). P. 178-184.

11. Hillier S.L., Martius J., Krohn M. et al. A case-control study of chorioamnionic infection and histologic cho-rioamnionitis in prematurity // N. Engl. J. Med. 1988. Vol. 319. P. 972-978.

12. Stout M.J., Conlon B., Landeau M. et al. Identification of intracellular bacteria in the basal plate of the human placenta in term and preterm gestations // Am. J. Obstet. Gynecol. 2013. Vol. 208. P. 226.e1-226.e7. doi: org/10.1016/j.ajog.2013.01.018.

13. Jimenez E., Fernandez L., Marin M.L. et al. Isolation of commensal bacteria from umbilical cord blood of healthy neonates born by cesarean section // Curr. Microbiol. 2005. Vol. 51. P. 270-274.

14. Болдырева М.Н., Липова Е.В., Алексеев Л.П., Вит-вицкая Ю.Г., Гуськова И. А. Характеристика биоты урогенитального тракта у женщин репродуктивного возраста методом ПЦР в реальном времени // Журн. aкушерства и женских болезней. 2009. Т. 58, № 6. С. 36-42.

15. Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., Трофимов Д.Ю. и др. Применение метода полимеразной цепной реакции в реальном времени для оценки микробиоценоза урогенитального тракта у женщин: медицинская технология. М., 2011. 34 с.

16. Ворошилина Е.С., Тумбинская Л.В., Донников А.Е., Плотко Е.Э., Хаютин Л.В. Биоценоз влагалища с точки зрения количественной полимеразной цепной реакции: что есть норма? // Акушерство и гинекология. 2011. № 1. С. 57-65.

17. Fortner K.B., Grotegut C.A., Ransom C.E. et al. Bacteria localization and chorion thinning among preterm premature rupture of membranes // PLoS One. 2014. Vol. 9 (1): e83338. doi: org/10.1371/journal.pone.0083338.

18. Steel J.H., Malatos S., Kennea N. et al. Bacteria and inflammatory cells in fetal membranes do not always cause preterm labor // Pediatr. Res. 2005. Vol. 57 (3). P. 404411. doi: org/10.1203/01.PDR.0000153869.96337.90.

19. Mitchell C.M., Haick A., Nkwopara E. et al. Colonization of the upper genital tract by vaginal bacterial species in nonpregnant women // Am. J. Obstet. Gynecol. 2015. Vol. 212 (5). P. 611.e1-611.e9.

20. Younes J.A., Lievens E., Hummelen R. et al. Women and their microbes: the unexpected friendship // Trends. Microbiol. 2017. Vol. 26. P. 16-32. doi: 10.1016/j.tim.2017.07.008.

21. Zhu L., Luo F., Hu W. et al. Bacterial communities in the womb during healthy pregnancy // Front. Microbiol. 2018. Vol. 9: 2163.