Preview

Journal of Siberian Medical Sciences

Расширенный поиск

Анатомическое обоснование модификации способа формирования тонкокишечного анастомоза в условиях распространенного перитонита

Аннотация

Представлены данные, основанные на изучении микроморфологии сосудов по линии шва тонкокишечного анастомоза и выявлении степени деформации данного анастомоза при различных углах пересечения кишечной стенки в условиях распространенного гнойного перитонита. Проведено анатомическое исследование на трупном материале. В подслизистом и мышечном слоях кишечной стенки при ее пересечении под углом 60° отмечено значительно большее количество артериальных и венозных сосудов, чем при проведении среза под углом 90° к оси кишки. Это происходит за счет того, что линия среза при пересечении под углом 60° получает кровоснабжение не менее чем от 2 смежных прямых артерий. В противоположность этому при проведении разреза под углом 90° кровоснабжение линии среза осуществляется ветвями только одной прямой артерии. Выявлено, что при пересечении кишечной стенки под углом 60° отсутствует критическая деформация анастомоза при существенном улучшении кровоснабжения по линии шва. При формировании тонкокишечного анастомоза «конец в конец» пересечение приводящей и отводящей петель под углом 60° способствует улучшению кровоснабжения линии швов, при его допустимой деформации, что улучшает репаративные процессы в зоне анастомоза и снижает вероятность его несостоятельности.

Об авторах

Ю. С. Вайнер
ФГБОУ ВО «Новосибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия


К. В. Атаманов
ФГБОУ ВО «Новосибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия


Я. А. Верятин
ФГБОУ ВО «Новосибирский государственный медицинский университет» Минздрава России
Россия


Список литературы

1. Егоров В.И. Кишечные анастомозы. Физико-меха-нические аспекты. М., 2004. 304 с.

2. Хирургия тяжелых гнойных процессов / Е.Г. Григорьев, А.С. Коган, К.А. Апарцин и др. Новосибирск: Наука, 2000. 313 c.

3. Hyoju S.K., Klabbers R.E., Aaron M. Oral рolyphosphate suppresses bacterial collagenase production and prevents anastomotic leak due to serratia marcescens and pseudomonas aeruginosa // Ann Surg. 2017, Feb 3.

4. Буянов В.М. и др. Однорядный непрерывный шов в абдоминальной хирургии // Хирургия. 2000. № 4. С. 13-18.

5. Королев В.А. Совершенствование способов кишечного шва // Вестн. РГМУ. 2005. Т. 42, № 3. С. 64.

6. Docherty J.G. et al. Comparison of manually constructed and stapled anastomoses in colorectal surgery // Annals of Surgery. 1995. Vol. 221, No. 2. P. 176-184.

7. Piccolomini A. et al. Manual and mechanic anastomosis. Comparison in oncologic surgery of the colon and rectum // Minerva Chirurgica. 1990. Vol. 45, No. 5. P. 237-240.

8. Burch J.M. et al. Single layer continuous versus two layer interrupted intestinal anastomosis: a prospective randomized trial // Annals of Surgery. 2000. Vol. 231, No. 6. P. 832-837.

9. Будашев В.П. и др. Методы оптимизации кишечного анастомозирования в условиях экспериментального распространенного гнойного перитонита // Бюл. ВСНЦ СО РАМН. 2006. № 6 (52). С. 139-146.

10. Винник Ю.С., Кочетова Л.В., Маркелова Н.М. и др. Применение кишечного шва в абдоминальной хирургии // Фундаментальные исследования. 2014. № 7-1. С. 177-180.

11. Naito M., Miura H., Nakamura T., Sato T., Yamanashi T., Tsutsui A., Watanabe M. Sutureless functional end-to-end anastomosis using a linear stapler with polyglycolic acid felt for intestinal anastomoses // Ann. Med. Surg. (Lond). 2017 Mar 31. 17. Р. 50-53. doi: 10. 1016/j. amsu. 2017. 03. 037. eCollection 2017 May.

12. Жук И.Г., Салмин Р.М., Гайдук А.В., Салмин И.М., Стенько А.А. Способы профилактики несостоятельности межкишечных анастомозов (обзор) // Журн. Гродненского гос. мед. ун-та. 2010. № 1 (29). С. 3-6.

13. Witzke J.D. Stapled versus hand sewn anastomoses in patients with small bowel injury: a changing perspective // Trauma. 2010. Vol. 43, No. 2. P. 250-255.

14. Tabola R., Cirocchi R., Fingerhut A. et al. A systematic analysis of controlled clinical trials using the NiTi CAR™ compression ring in colorectal anastomoses // Tech Coloproctol. 2017 Mar. 21(3). P. 177-184. doi: 10. 1007/s10151-017-1583-2. Epub 2017 Jan 28. Review.

15. De Fina S., Franciosi C., Codecasa G. et al. The use of the biofragmentable ring (BAR-Valtrac) in colon surgery // Minerva Chir. 2000 Mar. 55(3). Р. 133-137. Italian.

16. Жариков А.Н., Лубянский В.Г., Кантеева Ю.Л., Лядгина Т.В. Влияние нарушений региональной гемодинамики и микроциркуляции кишечной стенки на возникновение острых перфораций тонкой кишки // Вестн. эксперимент. и клин. хирургии. 2015. Т. 8, № 1 (26). С. 34-44.

17. Kilam S.K., Jackson F.L., Williams H.T. Bacterial peritonitis and the bursting strength of intestinal anastomoses // Can. J. Surg. 1975 Jul. 18(4). P. 372-375, 378.

18. Hau T., Payne W.D., Simmons R.L. Fibrinolytic activity of the peritoneum during experimental peritonitis // Surg. Gynecol. Obstet. 1979 Mar. 148(3). P. 415-418.

19. De Franco S., Gelmetti M., Lampugnani R., Gamrielli M. Effects of lymph stasis on healing of rat intestinal anastomosis // Lymphology. 1984 Sep. 17(3). P. 100-104.

20. Сипливый В.А., Гринченко С.В., Горголь Н.И., Доценко В.В., Евтушенко А.В. Патоморфологические особенности гемоциркуляторного русла тонкого и толстого кишечника при остром перитоните //Klin. Khirurgia. 2014. № 1. С. 61-63.

21. Osterberg J., Johnsson C., Gannedahl G., Westlund A., Haglund U. Alterations in mucosal immune cell distribution in septic rats // Shock. 1997 Mar. 7(3). P. 182-185.

22. Cуковатых Б.С., Блинков Ю.Ю., Фролова О.Г. Механизмы развития распространенного перитонита // Вестн. эксперимент. и клин. хирургии. 2012. Т. 5, № 2. С. 469-477.

23. Hesp W. et al. Histological features of wound repair: a comparison between experimental ileal and colonic anastomoses // British Journal of Experimental Pathology. 1985. Vol. 66, No. 5. P. 511-518.

24. Ding C., Ren J., Zhou B. et al. Laser speckle contrast imaging for assessment of abdominal visceral microcirculation in acute peritonitis: does sequential impairments exist? // Microvasc Res. 2014 Sep. 95. P. 26-30. doi: 10. 1016/j. mvr. 2014. 06. 011.

25. Chou M.C., Wilson M.A., Spain D.A., Hadjiminas D., Anderson G.L., Cheadle W.G., Garrison R.N. Endothelin-1 expression in the small intestine during chronic peritonitis // Shock. 1995 Dec. 4(6). P. 411-414.

26. Mohammad U. N. et al. Anastomotic disruption after large bowel resection // World Journal of Gastroenterology. 2006. Vol. 12, No. 6. P. 2497-2504.

27. Егиев В.Н. Однорядный непрерывный шов анастомоза в абдоминальной хирургии. М.: Мед-практика-М, 2002.


Рецензия

Для цитирования:


Вайнер Ю.С., Атаманов К.В., Верятин Я.А. Анатомическое обоснование модификации способа формирования тонкокишечного анастомоза в условиях распространенного перитонита. Journal of Siberian Medical Sciences. 2018;(1):21-31.

For citation:


Vainer Y.S., Atamanov K.V., Veryatin Y.A. Anatomical justification of a modified way of enteric anastomosis formation under diffuse peritonitis. Journal of Siberian Medical Sciences. 2018;(1):21-31.

Просмотров: 152


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2542-1174 (Print)